植物可溶性糖含量是指在植物体内可溶解于水的单糖类和双糖类碳水化合物的含量。这些碳水化合物在植物体内的代谢中起着重要作用，包括能量储备、信号传导、生长和发育。因此，测定植物可溶性糖含量对于了解植物生长发育及其代谢过程的研究非常重要。
测定植物可溶性糖含量的方法多种多样，但主要可以分为色谱法和光度法两种。
色谱法是目前最为常见、最为准确的测定植物可溶性糖含量的方法之一。其基本原理是利用高效液相色谱（HPLC）或气相色谱（GC）的技术，将样品中的糖类化合物进行分离，并以Uv吸收法检测出单糖和双糖的含量。常用的色谱柱有Carbohydrate Ca2+ （Carb Ca2+）、Carb-Pac PA1、Carb-Phenomenex Luna NH2等。
使用色谱法测定植物可溶性糖含量的优点在于，可以对不同类型、不同含量的糖类进行定量分析，精度高。但缺点也比较明显，需要较为昂贵的设备，操作复杂，且需要一定的技术和经验支持。
光度法是另一种常用的测定植物可溶性糖含量的方法，能够测定出总可溶性糖量。其基本原理是，将样品中的糖与硫酸或苯酚催化反应，产生一种具有吸光度的复合物，然后利用紫外可见分光光度计测定吸光度，最终通过一个标准曲线计算出样品中可溶性糖的含量。
采用光度法测定植物可溶性糖含量的优点是能够测出总量，操作简单、快捷并且成本低廉。但其缺点也很明显，比如同部位不同组织中的可溶性糖种类和含量可能不同，不能进行定量分析。
除此之外，酶切法、显色反应法和红外光谱法等方法也可以用于测定植物可溶性糖含量。根据研究需要、实验条件、测量准确度等因素进行选择。
需要注意的是，在测定植物可溶性糖含量时，应注意样品的处理和保存方式。一般来说，叶片等组织应在采集后迅速置于液氮中冷冻保存，以避免糖类的每乘。同时，样品切片后的处理时间尽量缩短，以免干扰结果的准确性。
综上所述，测定植物可溶性糖含量的方法根据实验需求不同、实验条件不同，其选择也会产生差异。只有选择合适的测定方法，并注意样品处理和保存，才能得到准确的测定结果。